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检测益生素的几种办法

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发表于 2014-6-14 14:33:45 | 显示全部楼层 |阅读模式
益生菌不仅有很多种类(如芽孢杆菌、乳酸菌、酵母菌),其检测方法也是非常之多。对不同的益生素,需要选择适当的方法来检测、计数。
目前常用的检测是显微镜直接计数法平板计数法两种,显微镜直接计数法的最大优点就是快速,而且此方法可以通用,即不同的益生菌种类都可以用同一方法检测其数量;但其也有诸多缺点,如不能区分死菌和活菌,也不能区分形状类似的不同益生菌,故其只能作为一种粗略、简单的方法。而平板计数法却可以克服显微镜计数法的缺点,但其对操作人员素质及操作能力要求都比较高,需要比较专业人员来操作。
针对目前选择以平板计数来进行测量益生菌的含量为主,本文也就此方法作一简单探讨。
计数培养的稀释度选择
根据产品说明选择适宜的稀释度。
采用玻片直接涂布法,即在洁净的玻片上划1cm2正方形,然后吸取经5~10倍稀释的检样0.01mL涂布在方框内,干燥固定后,先用甲醇处理5min再进行革兰氏染色、镜检,判断大概菌数和菌种,则可预测分离培养应选择的培养基和稀释倍数,如不能判断,即认为每克样品含菌数小于105。
培养基的选择
根据涂布的预测与产品说明,选择相应的培养基。
检测的操作
稀释:
准确称取益生素样品10g,放入装有90mL无菌水的玻璃瓶中,用手或振荡机振荡20min,静置约20min,即成10-1稀释液;再用10mL无菌吸管,吸取10-1菌液10mL移入装有90mL无菌水的玻璃瓶中,充分震荡,即成10-2稀释液;以此类推,每次更换吸管连续稀释,直到制成适当稀释度的菌悬液。
平板接种:
用1mL无菌吸管吸取适当稀释度的菌悬液1mL到一个灭菌平皿中,接种好三个平皿,再在培养皿中分别倒入已融化并冷却至45-50℃左右的培养基,盖好盖子,趁热轻轻转动培养皿,使菌液与培养基混合均匀,冷凝后倒置37℃下培养48~72h后长出菌落后即可计数。
结果计算及说明:
将三个平皿的平均菌落数乘以稀释倍数,即为每g益生素中所含的活菌数(如在10-8有30个菌落,即可计为3.0×109cfu/g或者cfu/mL)。选取菌落数在30-300之间的平皿作为菌落总数测定的标准。
讨论
益生素菌种的质量是微生态调节剂生产的关键和质量保证,因此在生产前必须作如下鉴定:
(1)菌株染色形态与菌落均应具典型特征;
(2)生化反应与糖发酵均应符合伯杰氏细菌分类的特征;
(3)对于乳酸菌类须测定其代谢产物中的有机酸;
(4)血清学检查、凝聚试验,效价不低于原效价的1/2;
(5)毒性试验:浓菌液给小白鼠腹腔注射或灌胃试验,小白鼠应无不良反应出现;
(6)必要时作遗传学特征的鉴定。

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