合成氨基酸在水产饲料中的应用

apple12151007 · 发表于 2010-8-18 13:55:38

　　合成氨基酸在水产饲料中的应用

　　朱亚平1 郑银桦1 薛敏1 丁建忠2任泽林2 吴秀峰1

　　(1. 中国农业科学院饲料研究所水产动物与营养研究室，北京 100081　　2.北京英惠尔生物技术有限公司，北京，100081)

　　摘要：氨基酸是蛋白质质量的决定因素，添加合成氨基酸能否改善饲料氨基酸平衡，进而促进水产动物生长一直未有定论。本文根据现有研究资料，综述了合成氨基酸在水产饲料中的应用效果，限制合成氨基酸应用效果的因素及可能的解决办法和氨基酸使用建议。
　　关键词：合成氨基酸;水产饲料;利用率
　　蛋白质约占鱼体湿重的16%~18%，是鱼体肌肉、血液、酶、激素和胶原蛋白等的主要组成物质，它在维持体内酸碱平衡，保持水分正常分布，传递遗传信息和转送各种营养物质等方面均起着重要的作用。鱼粉由于氨基酸平衡、适口性佳、消化率高，一直是水产饲料尤其是肉食性水产动物料主要的蛋白原料，但由于世界鱼粉资源有限，而世界水产养殖产量保持高速增长，替代蛋白的应用研究成为水产动物营养研究的热点。Alam等(2004)认为除了抗营养因子、适口性等因素外，蛋白原料氨基酸平衡与否是决定饲料蛋白营养价值最主要的因素。Takeshi等(2000)通过试验发现氨基酸的平衡程度较之于粗蛋白含量对虹鳟(Oncorhynchus mykiss)生长性能的影响更大。如何改善蛋白原料的氨基酸平衡成了研究的焦点，饲料蛋白源的合理配伍是解决这一问题的方法之一，但合成氨基酸的添加无疑是最为直接的解决办法。关于合成氨基酸在水产饲料中的应用效果及使用方法在学术界一直存在较大争议，本文根据现有文献资料，对合成氨基酸在水产饲料中的应用效果的研究概况做一综述，以期为今后的相关研究提供参考。
　　1合成氨基酸在水产饲料中的应用效果
　　关于合成氨基酸在水产动物饲料中的应用的研究很多，但结论存在较大分歧。部分学者认为，添加合成氨基酸可以改善氨基酸不平衡状况，促进蛋白质吸收利用，进而促进水产动物的生长。Eric等(2000)在用低脂豆粉部分替代鱼粉的研究中加入多种合成氨基酸显著提高了美国龙虾(Homarus americanus)的生长性能。Floreto等(2000)报道在豆粕型饲料添加合成氨基酸可以显著提高美国龙虾的生长性能。村井和王道尊(1989)在鲤鱼大豆粕饲料中添加0.25%的DL-Met后显著提高鲤鱼(Cyprinus carpio)的生长率和饲料效率。周小秋等(2005)研究结果表明，在饲料中添加合成赖氨酸可显著提高建鲤的采食率、饲料利用率和增重率。蒋艾青等(2002)研究表明在饲料中添加组氨酸可以提高青鱼(Mylopharyngodon piceus)的生长速度，降低饲料系数，认为添加合成氨基酸可以降低饲料蛋白水平。张满隆等(2001)试验表明添加0.25%蛋氨酸，鲫鱼(Carassius auratus)生长速度显著提高，饲料系数显著降低。刘长忠(2001)指出在鲫鱼饲料中添加适量的蛋氨酸和赖氨酸不但可以降低饲料的粗蛋白水平，还能改善饲料的适口性，提高鲫鱼的增重率，降低饲料系数。Tengjaroenkulet(2000)报道在饲料中添加蛋氨酸可显著促进尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)生长。Saidy 等(2002)指出在尼罗罗非鱼豆粕饲料中添加合成赖氨酸，可达到与鱼粉饲料组相似的生长效果。Kim等(1991)在以酪蛋白为蛋白源的饲料中添加蛋氨酸和精氨酸(酪蛋白的限制性氨基酸)饲喂虹鳟，粗蛋白30%的饲料组即可达到未添加氨基酸粗蛋白含量40%饲料组的生长效果。Markus(2000)试验表明在不同粗蛋白水平的虹鳟饲料中添加赖氨酸均有促进生长，增加蛋白沉积的作用。Cheng等(2003)研究表明在植物源饲料中添加合成赖氨酸可以显著提高虹鳟的生长速度。Takeshi等(2005)指出在日粮中适量添加必需氨基酸可以促进虹鳟对饲料蛋白质的利用率，并降低N排放率。Ian Forster等(1998)报道随着赖氨酸的添加日本褐牙鲆(Paralichtys oliaceus)和真鲷(Pagrus major)幼鱼的生长率和氮沉积都显著增加，脂肪沉积下降。Strorebakken 等(2000)研究表明在大西洋鲑(Salmo salar)大豆浓缩蛋白饲料中添加合成氨基酸可有效降低饲料系数，改善生长性能。Williams等(2001)指出鲈鱼(Lates calcarifer Bloch)可以较好的利用饲料中的合成氨基酸。
　　并非所有研究都认为水产动物可以有效的利用合成氨基酸，而且即使针对同一品种，结论也不相同。如：Pongmaneerat等(1993)的研究显示在鲤鱼的无鱼粉饲料中添加赖氨酸、蛋氨酸和苏氨酸对改善饲料的蛋白质和能量沉积没有帮助。刘永坚等(2002)研究表明添加合成赖氨酸对草鱼生长无促进作用。Viola等(1994)试验发现罗非鱼不能很好地利用合成氨基酸。Whiteman 等(2005)试验发现饲料中的合成氨基酸不能被虹鳟利用。Aoki 等(2000)，Takagi 等(2001)指出真鲷不能有效的利用合成氨基酸。Sveier 等(2001)的研究显示在饲料中添加L-Met对大西洋鲑的生长性能没有帮助。同样，对于甲壳类也有类似的报道：麦康森(1987)认为在中国对虾(Penaeus chinensis)饲料中添加氨基酸反而会抑制生长。Teshima等(2004)、Alam等(2004, 2005)都通过试验证明日本沼虾(Marsupenaeus japonicas)不能很好的利用合成氨基酸。
　　导致合成氨基酸应用效果差异的原因有很多，其中最主要的一个原因是氨基酸需求量标准的缺乏。相对于畜禽动物，对水产动物氨基酸需求的研究报道很少，仅对部分品种对少数几种限制性氨基酸(如Lys，Met, Arg)需求量进行了初步研究，且结论不统一，缺乏全面性和系统性。以尼罗罗非鱼为例，NRC(1993)年标准中赖氨酸的需求量仅为1.43，而以罗非鱼肌肉氨基酸模式确定的赖氨酸需求量为1.66。Furuya等(2004)以罗非鱼肌肉氨基酸模式为依据，通过添加蛋氨酸、赖氨酸和苏氨酸对无鱼粉饲料组进行氨基酸平衡使其达到了与鱼粉组相同的生长效果，NRC标准中赖氨酸的量显然并不能满足氨基酸平衡。随着合成氨基酸的生产工艺日渐完善，成本逐渐降低，对水产动物氨基酸需求的研究还将有助于推进合成氨基酸在水产饲料中的应用，通过在饲料中补充合成氨基酸达到理想蛋白模式，提高蛋白质利用效率，从而缓解蛋白资源紧张的现状。
　　2限制合成氨基酸在水产饲料中应用的因素
　　2.1 合成氨基酸的水中溶失率高
　　合成氨基酸本身易溶于水，Wilson等(1980)在用添加了合成氨基酸的饲料投喂斑点叉尾鱼回(Ictalurus punctatus)时监测到50%以上的合成氨基酸溶失在养殖水体中。对于对虾等抱食性水生动物而言合成氨基酸溶失问题更加严重，Chhom等(1995)在凡纳滨对虾(Penaeus vannamei)上通过试验证明了这一点。Alam等(2005)在试验中检测到对虾饲料于水中浸泡10min其合成氨基酸损失达40%。
　　2.2 合成氨基酸和完整蛋白吸收不同步
　　由于部分水产动物消化道自身特点造成的合成氨基酸和完整蛋白吸收不同步是影响合成氨基酸应用效果的关键因素。李爱杰和麦康森(1987)在中国对虾(Penaeus chinensis)饲料中添加同位素标记的合成赖氨酸，研究发现，添加的赖氨酸大部分在中肠前的中肠腺已被吸收，蛋白质氨基酸此时还没有被分解吸收，二者吸收时间上的不同步导致蛋白质合成受阻，生长性能非但没有提高反而下降。Teshima等(2004)对日本沼虾(Marsupenaeus japonicas)的研究也证实这一点。
　　造成合成氨基酸吸收不同步的原因可能有许多，其中Cowey 等(1983)研究指出，动物体内存在氨基酸库，可暂时储存多余的氨基酸，而水产动物尤其无胃动物体内游离氨基酸库存储能力有限，突然增加的某一种氨基酸使其不堪重负，机体启动氨基酸分解体系,“过量”的氨基酸被大量分解，Cowey(1988)还通过对氨基酸进行同位素标记，短时间内在排泄物中监测到标记物证实了这一说法。饲料中的游离氨基酸在进入水产动物消化道后很快被机体吸收进入血液、组织液中，可能会很快形成单个氨基酸量的高峰值，饲料蛋白质在消化道内分解尚未完成的情况下，机体难以启动蛋白质合成机制。Annette等(1997)通过监测饲喂蛋白和合成氨基酸复合物饲料的虹鳟血浆氨基酸水平，发现饲喂合成氨基酸组，其血浆氨基酸峰值出现时间比饲料组提前了一半。此时氨基酸体内内稳态机制可能会启动，这将刺激氨基酸氧化分解机制将单个氨基酸形成的高峰值削减下来以保持内稳态。这样在饲料中添加的限制性氨基酸在进入体内后很快被氧化分解掉，就不能起到补充限制性氨基酸的作用，也就不具有促生长效果。Cowey等 (1983)通过测定虹鳟摄食后经鳃和肾排出的含氮物质，发现鱼所摄食的合成氨基酸有36%被排入水中。Murai(1985)的研究也发现，有高达40%的合成氨基酸未参与蛋白质合成而直接从鳃、肾排出。 Liou 等(2005)报道摄食合成氨基酸饲料的对虾尿液中总氨和游离氨基酸的含量极显著的高于摄食蛋白饲料的对虾。
　　2.2 其他因素
　　除了以上两个主要原因外，养殖环境(如水温，pH值)、饲料制作、投饲管理，水产动物的消化生理特点等因素也会影响到合成氨基酸在水产饲料中的应用。Higuera等(1998)试验指出随着温度的升高，鲤鱼对合成氨基酸的利用率逐渐下降，认为是肠道蠕动加快，加剧了合成氨基酸和蛋白质的吸收时间差。pH值对合成氨基酸利用效率的影响亦有不少报道。Wilson等(1977)报道在pH值接近7时斑点叉尾鮰对饲料中的合成氨基酸利用率最高。Lim等(1993)报道在pH 4.8～8.0时，给对虾投喂合成氨基酸饲料，其生长性能和摄食量随着pH值的升高而增加。另外饲料成形度、溶失率会影响到合成氨基酸的水中稳定性进而影响其在饲料中的应用效果。Chiji等(1990)认为晶体氨基酸和完整蛋白对肠道内特定酶制剂刺激程度不同从而影响晶体氨基酸的利用效率。
　　3 改进合成氨基酸生物效价的措施。
　　3.1 增加投喂频率
　　增加投喂频率可以在一定程度上改善吸收的不同步，为添加的游离氨基酸与饲料中蛋白分解的氨基酸提供一个相遇、结合的机会。Yamada等(1981)研究表明，用添加了合成氨基酸的饲料投喂鲤鱼，当日投喂3次时，增重率较未添加组提高39%，当投喂频率增加到18次/d后，增重较对照组提高了175%。李爱杰(1989)试验证实，增加投饵次数可显著提高中国对虾对合成氨基酸的利用率。Zarate等(1999)研究指出，增加投喂频率可以显著提高斑点叉尾鮰对饲料中合成赖氨酸的利用率，进而改善其生长性能、降低饲料系数。王冠(2005)研究表明，日投喂2-3次时，补充合成氨基酸不能改善异育银鲫的生长性能，当将日投喂次数增加到4次后，异育银鲫的生长性能得到显著改善。周小秋等(2005)在幼建鲤的研究中也得到相似的结论。建议生产中使用添加了合成氨基酸的饲料时，通过使用自动投饵机适当增加投喂频率，加强管理。
　　3.2 对合成氨基酸进行稳定化处理
　　对合成氨基酸进行稳定化处理，可以减少氨基酸的溶失率，改善和结合氨基酸吸收不同步的状况。稳定化处理的方法一般有螯合、合成小肽和包膜几种。其中有关氨基酸螯合物作用的报道主要侧重于改善矿物质吸收方面;而小肽的研究侧重于其免疫功能;包膜处理是一种工艺相对简单缓释作用显著的稳定化处理方法。
　　微胶囊及各种包膜技术首先应用于开口饵料的研究中，试验过程中发现这一技术可以延缓营养物质的释放，并逐渐将这一技术借鉴到合成氨基酸应用研究中来。Murai等(1981)在鲤鱼幼鱼纯化饲料中分别添加游离氨基酸和酪蛋白包膜的氨基酸，通过比较两组鱼血浆中游离氨基酸的变化，发现酪蛋白包膜的氨基酸通过改变色氨酸和亮氨酸的吸收和保留倍数保证了血浆中氨基酸平衡，鱼生长速度提高了四倍，饲料效率提高了两倍。Tonheim等(2000)分别用合成蛋氨酸和脂质包膜的蛋氨酸饲喂丰年虫，结果包膜氨基酸的体内沉积率是合成蛋氨酸的60倍。Yu´feraa等 (2003)在研究幼虫的开口饵料时，采用微胶囊的方法，将幼虫生长需要的多种营养物质包括多种游离氨基酸包被于微胶囊内，实验证明通过微胶囊包被可有效减少氨基酸的溶失，提高其利用率，得到了很好的生长效果。Alam 等(2005)通过试验证明在饲料中添加包膜赖氨酸或蛋氨酸，日本沼虾增重率显著提高。Murai等(1982)研究表明，摄食包膜氨基酸组的鲤鱼生长速度和生长率分别是未包被氨基酸组的4倍和2倍。阎军等(2004)试验证明，在鲤鱼无鱼粉饲料中补充适量的包膜氨基酸可达到与添加鱼粉组相同的生长效果，显著优于不添加氨基酸的无鱼粉组。周小秋等(2005)在幼建鲤饲料中添加不同形式的赖氨酸后，发现包膜赖氨酸组增重率显著高于未经包膜处理组。刘永坚等(2002)在草鱼实用饲料中分别补充合成赖氨酸和包膜赖氨酸，试验结果表明补充包膜赖氨酸组与不补充或补充合成赖氨酸组比较，增重率、蛋白质效率、血清必需氨基酸平衡指数(Essential amino acids index, EAAI)和蛋白质合成率都得到改善。Manuel等(2004)研究发现，包膜蛋氨酸可以减少水中溶失，并延缓其在尼罗罗非鱼肠道中的吸收速度。
　　目前关于包膜材料的研究有限，多数研究仅停留在包膜和未包膜添加效果的比较，深入比较不同包膜材料优缺点的报道还非常有限。Manuel 等(2004)通过试验比较了聚乙烯醇三棕榈酸甘油酯和邻苯二甲基乙酸纤维素作为包膜材料的缓释效果，发现用聚乙烯三棕榈酸甘油酯包膜可以有效的延缓合成氨基酸在尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus )肠道的吸收速度。Yúfera等(2002)通过实验认为，和明胶相比以蛋白质作为包材可以减少内容物的损失。今后研究的重点应该是，在确定吸收时间差的基础上，体外模拟消化环境，筛选最适合的包膜材料。
　　4. 合成氨基酸的使用方法
　　为了使添加的合成氨基酸发挥最大效应，除了对合成氨基酸进行有效处理和增加投喂频率外，还应当根据不同水产动物对合成氨基酸的利用规律选择恰当的使用方法。
　　4.1氨基酸的添加依据
　　应该根据特定的水产动物营养需求和氨基酸的限制性进行氨基酸平衡，添加饲料的限制性氨基酸。Meng 等(1998)通过实验证明向氨基酸基本平衡的低蛋白日粮中添加合成赖氨酸、蛋氨酸对美洲鲇(Ictalurus punctatus)无促生长作用，说明只有在某种限制性氨基酸缺乏的情况下进行添加才能发挥作用。同时添加多种限制型氨基酸效果优于只添加其中一种，Alam 等(2005)试验证明在日本沼虾饲料中同时添加包膜赖氨酸或蛋氨酸，较之仅添加一种氨基酸时增重率显著提高。但要注意避免氨基酸之间的颉抗作用，Gerd等(1998)在实验中发现添加过量的赖氨酸(Lys)会阻碍精氨酸(Arg)的利用进而影响试验动物的生长。
　　4.2 氨基酸的添加量
　　进行合成氨基酸的添加时需要根据动物的营养需求，确定最适添加量，力争做到理想氨基酸模式(ideal amino acid pattern, IAAP)。理想氨基酸模式由NRC(1981)首次提出并将理想蛋白质定义为饲料蛋白质中的各种氨基酸含量与动物用于特定功能所需要的氨基酸量相一致。Fuller 和Wang (1989)等在生长猪上做了大量有关理想蛋白模式的试验,认为运用理想蛋白模式配合日粮,可以明显降低日粮粗蛋白质含量。Akiyama等(1989)认为实验动物的肌体或肌肉氨基酸模式可作为指导合成氨基酸添加模式的有益参数。Alam等(2002)以酪蛋白-明胶作为基础蛋白源，分别参照实验动物卵、幼体、稚体以及成鱼肌体氨基酸模式用合成氨基酸替代部分基础蛋白，共形成5组饲料，试验证实按照成鱼肌体氨基酸配制的合成氨基酸替代饲料组增重率和饲料转化效率最高，其次是对照组，然后是稚鱼模式组、幼体模式组，最后是卵模式组。Furuya 等(2004)根据以肌体成分确定的理想蛋白模式向豆粕型饲料中添加合成氨基酸，尼罗罗非鱼达到了与鱼粉组相似的生长效果。
　　过多或过少的添加合成氨基酸都不利于水产动物的利用。Alam等(2003)向日本对虾(Penaeus japonicus)饲料中添加由低到高几个梯度的精氨酸，试验结果表明，只有在添加量适当时日本对虾才表现出较好的促生长效果，过量的精氨酸不能有效转化为肌体蛋白。Vilson等(1977)研究表明，添加过量赖氨酸可抑制斑点叉尾鮰和尼罗罗非鱼的生长。最佳添加剂量的确定还需要到饲料原料的特殊性。涂永锋等(2004)分别以菜粕和血粉为主要原料，按照鲫鱼肌肉必需氨基酸模式添加和倍量添加合成异亮氨酸(Ile)配制饲料，与缺乏Ile的饲料进行对比饲养试验，结果表明，菜粕组添加氨基酸无促生长效果，倍量添加表现出抑制生长;血粉组两种添加剂量均表现出明显的促生长效果。由于血粉可利用异亮氨酸极度缺乏，添加的异亮氨酸缓解了氨基酸不平衡状态，从而促进生长，可见两种原料中异亮氨酸含量的差异导致不同试验结果，同时该试验也再次证明了过量添加不但不能促进生长反而有抑制作用。
　　参考文献
　　[1]蒋艾青，王晓华.青鱼饲料添加组氨酸的实验[J].中国水产.2002(6)：67
　　[2] 刘长忠，周克勇.添加合成氨基酸降低蛋白质水平对鲫鱼生产性能的影响[J].饲料工业。2001，22(6)：9-11
　　[3] 刘永坚，刘栋辉，田丽霞，等.草鱼饵料中结晶和包膜氨基酸的生物效应[J].水产学报，1999，23(增刊)：51-56
　　[4] 刘永坚，田丽霞，刘栋辉，等.实用饵料补充结晶或包膜赖氨酸对草鱼生长，血清游离氨基酸和肌肉蛋白质合成率的影响[J]。水产学报，2002，26(3)：252-258
　　[5] 麦康森，李爱杰，尹左芬.中国对虾中肠对氨基酸运输动力学研究[J].海洋与湖沼，1987，18(5)：426-431
　　[6] 涂永锋，叶元土，宋代军，等。游离异亮氨酸对鲫鱼的促生长作用[J].水产科技情报，2004，31(4)：154-157
　　[7] 阎军，扬子龙，等.缓释赖氨酸在鲤鱼饲料中的应用.饲料研究.2004.7：36-37
　　[8] 赵元凤，赵睿，吕景才.氨基酸螯合盐对罗非鱼、鲤鱼的促生长效果.西南农业大学学报，2000，22(2)：131-133
　　[9] 张满隆，邓理。蛋氨酸在鲫鱼饲料中应用试验[J].饲料工业.2001，22(6)：11-12
　　[10] 周小秋，赵春蓉。赖氨酸对幼建鲤消化能力和免疫功能的影响.[硕士论文]，雅安，四川农业大学，2005
　　[11] 王冠. 2005. 合成氨基酸经微胶囊技术处理后对异育银鲫生长影响的研究[D]. 硕士学位论文，上海水产大学, 2005.
　　[12] Alam M.S., Teshima S., Yaniharto D., Koshio S., Ishikawa M., Influence of different dietary amino acid patterns on growth and body composition of juvenile Japanese flounder, Paralichthys olivaceus (a) [J],
　　Aquaculture ,2002，210, 359– 369
　　[13] Alam M.S., Teshima S., Ishikawa M., Koshio S., Dietary amino acid profiles and growth performance in juvenile kuruma prawn Marsupenaeus japonicus(b) [J]. Comp. Biochem. Physiol. 2002,133(B), 289– 297.
　　[14] Alam M.S., Teshima S., Ishikawa M., Koshio S.,. Effects of supplementation of coated crystalline amino acids on growth performance and body composition of juvenile kuruma shrimp Marsupenaeus
　　Japonicus[J]. Aquaculture Nutrition. 2004,.10, 309– 316.
　　[15] Alam M.S, Teshima S, Koshio S, et al. Supplemental effects of coated methionine and/or lysine to soy protein isolate diet for juvenile kuruma shrimp, Marsupenaeus japonicas [J]. Aquaculture, 2005, 248: 13–19.
　　[16] Annette Schuhmacher, Christine Wax, Jiirgen M. Gropp.Plasma amino acids in rainbow trout (Oncorhynchus )fed intact protein or a crystalline amino acid diet[J]. Aquaculture ,1997,151:15-28
　　[17] Aoki H, Furuichi M, Watanabe K, et al. Use of low or non-fish meal diets for red sea bream [J]. Suisanzoshoku, 2000, 48: 65–72.
　　[18] Chhom L.Effect of dietary pH on amino acid utilization by shrimp [A].Advance of the studies on nutrition of finfish and shellfish[M].Guangzhou: Zhongshan University Publishing House .1995:287-300
　　[19] Cowey C B, Leques P, Physiological basis of protein requirement of fishes. Critical analysis of requirements [A]. Protein mettabolism and nutrition. Vol.Ⅰ:INRA[M].365-384
　　[20] Cheng Z J, Hardy R W, Usry J L. Effects of lysine supplementation in plant protein-based diets on the performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and apparent digestibility coefficients of nutrients [J]. Aquaculture, 2003, 215: 255–265.
　　[21] Chyng-Hwa Liou, Shian-Chuann Lin, Jin-Hua Cheng，Urinary amino acid excretion by marine shrimp,Penaeus monodon, in response to orally administrated intact protein and crystalline amino acids[J], Aquaculture, 2005, (248):35-40
　　[22] de la Higuera M, Garzón A, Hidalgo M C, et al. Influence of temperature and dietary-protein supplementation either with free or coated lysine on the fractional protein turnover rates in the white muscle of carp [J]. Fish Physiology and Biochemistry, 1998, 18: 85–95.
　　[23] El-Saidy D. M. S. D., Gaber M. M. A. ,Complete replacement of fish meal by soybean meal with dietary L-lysine supplementation for Nile Tilapia Oreochromis niloticus (L.) fingerlings [J]. The Journal of the World Aquaculture Society, 2002, 33(3): 297–305.
　　[24] Eric A. T. Floreto, Robert C. Bayer and,Paul B. Brown, The effects of soybean-based diets, with and without amino acid supplementation, on growth and biochemical composition of juvenile American lobster, Homarus americanus, Aquaculture, 2000, 189(3):477-485
　　[25] Floreto E. A. T., Bayer R. C., Brown P. ,The effects of soybean-based diets, with and without amino acid supplementation, on growth and biochemical composition of juvenile American lobster, Homarus americanus [J]. Aquaculture, 2000, 189: 211–235.
　　[26] Gerd Eikeland Berge, Harald Sveier ,Einar Lied, Nutrition of Atlantic salmon (Salmo salar); the requirement and metabolic effect of lysine [J], Comparative Biochemistry and Physiology - Part A: Molecular & Integrative Physiology,1998,120(3):477-485
　　[27] Ian Forster a, Hiroshi Y. Ogata b..Lysine requirement of juvenile Japanese flounder Paralichthys oliÍaceus and juvenile red sea breamPagrus major[J]. Aquaculture, 1998, 161:131～142
　　[28] Kyu-Il Kim, Terrence B. Kayes , Clyde H. Amundson. Purified diet development and re-evaluatio of the dietary protein requirement of fingerling rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) [J]. Aquaculture, 1991,96( 1):57-67
　　[29] Lim C. Effect of dietary pH on amino acid utilization by shrimp (Penaeus vannamei) [J]. Aquaculture, 1993, 114: 293–303.
　　[30] ManuelA.Segovia-Quintero,Robert C.Reigh ,Coating crystalline methionine With Tripalmitin-polyvinyl alcohol slows its absorption in the intestine of Nile tilapia, Oreochromis niloticus [J].Aquaculture, 2004, 238(1-4): 355-367
　　[31] M de la Higuera .A Garzon.Infulence of temperature and diretary-portein supplementation with Free or coated lysine on the fractional protein turnover rates in the white muscle of carp [J].Fish Physiology and biochemistry, 1998, 18:85-95
　　[32] Md. Shah Alam, Shin-ichi Teshima, Shunsuke Koshio,et al. Supplemental effects of coated methionine and/or lysine tosoy protein isolate diet for juvenile kuruma shrimp,Marsupenaeus japonicus[J].Aquaculture,
　　2005, (248):13-19
　　[33] Meng H. Li, Edwin H. Robinson. Effects of supplemental lysine and methionine in low protein diets
　　on weight gain and bodycomposition of young channel catfish Ictalurus punctatus[J], Aquaculture,
　　1998,(163):297-307
　　[34] Murai T,Ogata Y,Hirasawa T,et.al. Poetal absoption and hepatic uptake of amino acids in rainbows trout force-feed completa diets containing casein or crystalline amino acids [S].Bull Jap Sci Fish, 1987, 53:1847-1859
　　[35] M. Yu´feraa,*, S. Kolkovskib, C. Ferna´ndez-Dı´aza,Free amino acid leaching from a protein-walled microencapsulated diet for fish larvae[J]. Aquaculture, 2002, 214:273–287
　　[36] Murai T,Akiyana T,Nose t. Use of crystalline amino acids coateded with casein in diets for carp[J].Bull Jap Soc SciFish, 1981, 47:523-527
　　[37] Murai T, Hirasawa Y, Akiyama T, et al. Effects of dietary pH and electrolyte concentration on utilisation of crystalline amino acids by fingerling carp [J]. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries, 1983, 49, 1377–1380.
　　[38] M. Yu´feraa,*, S. Kolkovskib, C. Ferna´ndez-Dı´aza, et.al.Delivering bioactive compounds to fish larvae using microencapsulated diets [J] . Aquaculture, 2003, 151:277–291
　　[39] M. Yúfera, S. Kolkovski, C. Fernández-Díaz,et.al .Delivering bioactive compounds to fish
　　larvae using microencapsulated diets[J]. Aquaculture, 2003, 227(10) : 277-291
　　[40] M. Yu´fera, S. Kolkovski, C. Ferna´ndez-Dı´az,et al. Free amino acid leaching from a protein-walled microencapsulated diet for fish larvae[J].Aquaculture, 2002, (214):273-287
　　[41] P. Gómez-Requeni, M. Mingarro, S. Kirchner, et.al. Effects of dietary amino acid profile on growth performance, key metabolic enzymes and somatotropic axis responsiveness of gilthead sea bream (Sparus aurata ) [J].Aquaculture, 2003, 220(14) : 749-767
　　[42] P. Gómez-Requeni , M. Mingarro , J. A. Calduch-Giner , et.al. Protein growth performance, amino acid utilisation and somatotropic axis responsiveness to fish meal replacement by plant protein sources in gilthead sea bream (Sparus aurata) [J],Aquaculture, 2004, 232(5) :493-510
　　[43] Schuhmacher A, Wax C, Gropp J M. Plasma amino acids in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed intact protein or a crystalline amino acid diet [J]. Aquaculture, 1997, 151: 15–28.
　　[44] S.K. Tonheim a, W. Koven b, I. Rønnestad a. Enrichment of Artemia with free methionine [J].Aquaculture, 2000, 190 :223–235
　　[45] Shin-ichi Teshima , Manabu Ishikawa , Md. Shah Alam ,et.al, Supplemental effects and metabolic fate of crystalline arginine in juvenile shrimp Marsupenaeus japonicus [J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology, 2004, 137(2):209-217
　　[46] Strorebakken T, Shearer K D, Roem A J. Growth, uptake and retention of nitrogen and phosphorus, and absorption of other minerals in Atlantic salmon Salmo salar fed diets with fish meal and soy-protein concentrate as the main sources of protein [J]. Aquaculture Nutrition, 2000, 6: 103–108.
　　[47] Sveier H, Nordås H, Berge G E, et al. Dietary inclusion of crystalline D- and L-methionone: effects on growth, feed and protein utilization, and digestibility in small and large Atlantic salmon (Salmon salar L.) [J]. Aquaculture Nutrition, 2001, 7: 169–181.
　　[48] Takagi S, Shimeno S, Hosokawa H, et al. Effect of lysine and methionine supplementation to a soy protein concentrate diet for red sea bream Pagrus major [J]. Fisheries Science, 2001, 67(6): 1088–1096.
　　[49] Takeshi M,Toshio A., Effect of coating amino acids with casein supplemental to gelatin diet on plasma free amino acid of carp [J].Bull Sap Soc Sci Fish, 1982, 48(5): 703-710
　　[50] Takeshi Yamamoto, Takao Shima, Hirofumi Furuita,et.al, Self-selection of diets with different amino acid profiles by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)[J], Aquaculture, 2000, 187:375–386
　　[51] Takeshi Yamamoto, Tsuyoshi Sugita, Hirofumi Furuita，Essential amino acid supplementation to fish meal-based diets with low protein to energy ratios improves the protein utilization in juvenile rainbow trout Oncorhynchus mykiss[J], Aquaculture, 2005, (246):379-391
　　[52] Teshima S, Ishikawa M, Alam S M, et al. Supplemental effects and metabolic fate of crystalline arginine in juvenile shrimp Marsupenaeus japonicas [J]. Comparative Biochemistry and Physiology, 2004, 137(B): 209–217.
　　[53] Viola S, Angeoni H, Lahav E. Present limits of protein sparing by amino acid supplementation of practical carp and tilapia feeds [J]. Journal of Aquaculture, 1994, 46: 203–211.
　　[54] Williams K, Barlow C, Rodgers L. Efficacy of crystalline and protein-bound amino acids for amino acid enrichment of diets for barramundi/Asian seabass (Lates calcarifer Bloch) [J]. Aquaculture Research, 2001, 1: 415–429.
　　[55] Whiteman K W, Gatlin Ⅲ D M. Evaluation of crystalline amino acid test diets including pH adjustment with red drum (Sciaenops ocellatus) and hybrid striped bass (Morone chrysops × Morone saxatilis) [J]. Aquaculture, 2005, 248: 21–25.
　　[56] Wilson R P, Harding D E, Garling D L. Effect of dietary pH on amino acid utilization and the lysine requirement of fingerling channel catfish [J]. Journal of Nutrition, 1977, 107(1): 166–170.
　　[57] Wilson R P,Poe WE,Robinsin EH.Leucine,Isolecine,Valine and Histidine requirements of fingerling channel catfish [J].Aquaculture Nutrition, 1980, 110: 627
　　[58] Wilson M Furuya, Luiz E Pezzato, et al. Use of ideal protein concept for precision formulation of amino acids levels in fish-meal-free diets for juvenile Nile tilapia Oreachormis niloticus L. [J]. Aquaculture Research, 2004, 35: 1110-1116
　　[59] Zarate D. D., Lovell R. T., Payne M., Effects of feeding frequency and rate of stomach evacuation on utilization of dietary free and protein-bound lysine for growth by channel catfish Ictalurus punctatus [J]. Aquaculture Nutrition, 1999, 5: 17–22.
　　A review on synthetic amino acid utilization in aquafeed
　　Zhu ya-ping1, Zheng yin-hua1, Xue min1*, Ding jian-zhong2, Ren ze-lin2, Wu xiu-feng1
　　(1. Aquaculture Nutrition and Feed Laboratory, Feed Research Institute, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Beijing 100081; 2.Beijing Enhalor Biotechnology Company, Beijing 100081)
　　Abstract: The paper reviewed the effects and the limiting factors of synthetic amino acids (SAA) utilization in formulated aquafeed. The measurements for promoting the efficiency of SAA were suggested as well.
　　Key words: synthetic amino acid; aquafeed; utilization