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如何测定真蛋白?

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发表于 2010-3-26 17:27:30 | 显示全部楼层 |阅读模式
大家好!大家都是怎么做真蛋白的?谢谢
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发表于 2010-4-23 12:31:12 | 显示全部楼层
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发表于 2010-4-23 12:39:51 | 显示全部楼层
测定氨基酸的方法测定。
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发表于 2010-4-23 13:19:56 | 显示全部楼层
前几天看到刚好有人发过一个相关的帖子,你可以搜索一下
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发表于 2010-4-23 13:28:43 | 显示全部楼层
在碱性条件用硫酸铜沉淀蛋白质,过滤后用测粗蛋白的方法测
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发表于 2010-7-8 10:35:17 | 显示全部楼层
测定步骤
  1.试样的前处理
  准确称取试样1~2g(精确到0.1mg)于250ml烧杯中,加蒸馏水50ml煮沸.依次加入10%硫酸铜水溶液20ml和2.5%氢氧化钠溶液20rnl,边加边搅拌,加完后继续搅拌几分钟。放置2小时或静置过夜,沉淀物以中速定量滤纸过滤。用70℃以上热水18ml反复洗涤沉淀.直至滤液无沉淀为止(取氯化钡试液滴于表面皿中。加2mol/L盐酸溶液1滴.滴人滤液.在黑色背景下观察应无白色沉淀)。然后,将滤纸和沉淀物包好,放人烘箱中在65~70℃下干燥2小时。
  2.试样的消化
  将烘干的试样连同滤纸一起放人凯氏烧瓶中.依次加入硫酸钾或无水硫酸钠9 硫酸铜1 浓硫酸25ml,摇匀,尔后置于电炉上先低温(100~200~C)加热,注意防止泡沫浮起,待泡沫消失后再提高加热温度(约410~C)至沸腾,消化至溶液澄清无黑点并呈蓝绿色,再继续加热30分钟,然后将凯氏烧瓶移出电炉放冷。
  3.定容
  将冷却后的消化液加蒸馏水约10~20ml,’摇匀后转入100ml容量瓶中,再加10~20ml蒸馏水洗涤凯氏烧瓶。溶液并入容量瓶中,如此反复洗涤,直至消化液全部转入容量瓶中。待冷却至室温后,加蒸馏水稀释至刻度,摇匀。即为试样分解液。
  4.蒸馏
  采用半微量凯氏定氮蒸馏法。先将水蒸汽发生器与半微量凯氏定氮蒸馏器连接好。在水蒸汽发生器的水中加入甲基红指示剂3滴与硫酸数滴,使水溶液保持橙红色,否则应补加少许硫酸。取20ml2%硼酸水溶液于250ml锥形瓶中,加0.1%甲基红乙醇溶液5~6滴,0.5%溴甲酚绿乙醇溶液2~3滴,摇匀。然后将锥形瓶置于半微量凯氏定氮蒸馏器的末端.使冷凝管末端浸入此吸收液面下2/3处。准确移取试样分解液10~15ml注入半微量定氮蒸馏器中,用少量蒸馏水冲洗进样口,尔后缓慢加入40%氢氧化钠水溶液20ml。用少量蒸馏水冲洗进样口,用玻璃塞塞好进样口。再加适量蒸馏水封住进样口以防止漏气。蒸馏3~5分钟以后待冷凝管末端管口之馏出液呈中性(红色石蕊试纸不变色)时将冷凝管末端离开吸收液面并冲洗冷凝管末端管口,洗液并入吸收液。再蒸馏1~2分钟后用蒸馏水冲洗冷凝管末端管口,洗液并入吸收液。然后将锥形瓶移出,准备滴定。此时应夹断气源。排出废液,准备下一个样品的测定。
  5.滴定
  吸收氨后的吸收液立即用0.05tool/1的盐酸标准溶液滴定使溶液颜色由蓝绿色变为灰红色即为滴定终点。同时记录盐酸标准溶液的耗用量。
  6.空白
  在进行样品测定的同时进行空白测定。空白测定除不加试样外其他操作步骤与试样相同。空白试验消耗的盐酸标准溶液的体积不得超过0.5ml。
   7.计算方法同粗蛋白
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