瘤胃微生物蛋白质产量的测定
嘌呤法
一、操作方法样本的嘌呤分析
1、准确称取0.5克充分干燥(用冻干机干燥)的食糜样本,或分离所得的食糜微生物部分样本,置于25ml具塞带刻度的试管内。注意:样本必须是干燥的,否则会导致核酸水解不完全。
2、加入2.5ml高氯酸(Hclo4,70%),紧盖瓶口,然后将其放在90~95℃的恒温水浴内培养1小时。此时样本即炭化,形成黑色硬结。最好是将硬结破碎,以利反应完全。
3、再加入17.5ml乙种PH缓冲液(NH4H2PO4,0.0285M),充分摇动,紧盖瓶口,重新置于90~95℃的恒温水浴内培养10~15分钟,然后通过Whatman 4号滤纸过滤,此时滤液的PH值为2左右。
4、取0.5ml滤液转移到容积为15ml的离心管内。分别加入0.5ml AgNO3(0.4M)和9ml甲种PH缓冲液(NH4H2PO4,0.2M)。然后置于暗处至少30分钟。最好是将其放置过夜(5℃),可提高分析的准确度。
5、于4000rpm离心15分钟,然后小心地弃去上清液。注意不要搅动瓶底的沉淀物。
6、用PH为2的蒸馏水洗离心分离所得沉淀物一次。用与第5步同样的方法离心,弃去上清液。
7、加入10ml 0.5N的盐酸溶液,充分摇动,使其与沉淀物混匀为止。
8、用具塞密封离心管,放在90~95℃的恒温水浴内培养30分钟。
9、用紫外分光光度计于260nm处比色,测得的嘌呤浓度用RNA当量表示。
酵母RNA(中国科学院上海生物化学研究所)
标准曲线的制定:准确称取0.05,0.10,0.15,0.20,0.25,0.30,0.4,0.50克酵母RNA,分别置于8个25ml的具塞带刻度的试管内,按上述分析样本内嘌呤含量的操作方法进行处理,最后于260nm处比色。 |