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加水调质对饲料霉变及发霉饲料对猪生产性能和器官病变的影响

简介
  何余涌 刘春雪 程宗佳 梁海平 刘晓兰 王 博 陆 伟   摘 要 制粒前向混合机内的粉料中分别添加0%、0.5%、1.5%和2.5%的水分,在相同条件下储存,并在第42d取样,进行霉菌毒素含量测定;另外,用发霉饲料饲喂4头试 ...
  何余涌 刘春雪 程宗佳 梁海平 刘晓兰 王 博 陆 伟
  摘 要 制粒前向混合机内的粉料中分别添加0%、0.5%、1.5%和2.5%的水分,在相同条件下储存,并在第42d取样,进行霉菌毒素含量测定;另外,用发霉饲料饲喂4头试验猪,研究发霉饲料对生长猪生产性能和组织器官病变的影响。结果表明,当水分添加量较大时(1.5%和2.5%),饲料经储存后霉菌毒素含量较高,特别是玉米赤霉烯酮受水分含量的影响最大;饲喂发霉饲料显着降低猪平均日增重和饲料转化率(P<0.05),并且肝、肾等脏器出现病变。
  关键词 水分;霉变;组织病变
  中图分类号 S816.33
  在混合机内的粉料中添加水分有助于提高淀粉糊化度和饲料中营养物质的消化率,减少颗粒饲料的含粉率。但是在粉料中添加水分会延长成品饲料的烘干时间并影响到成品饲料中水分含量。如果干燥时间和风速控制不好,则会导致成品饲料中水分含量过高,容易引起饲料霉变,导致饲料品质下降,影响动物健康。因此,在向粉料中添加水分时,需考虑其对饲料霉变的影响及霉变饲料对畜禽的危害。本研究的目的在于探索不同水分添加量对饲料霉变的影响程度及霉变饲料对生长肥育猪生产性能、脏器的影响。
  1 材料与方法
  1.1 饲料霉变试验(见表1)

  基础料配方不变,设0%、0.5%、1.5% 和2.5%四个水分添加组,分别向混合机内的粉料中添加上述比例的水分,制粒、烘干相同时间,然后将成品饲料包装。另外,每组各取5kg成品饲料,用透明塑料袋并用缝包机封口。所有饲料放在同一房间保存,储存期间每天分早、中、晚3次记录储存室内外的温度、湿度(见表1),并在第42d取霉变试验料样品进行霉菌毒素含量测定。

  1.2 霉变饲料饲喂试验

  饲养试验分两个组进行,每组4头,起始平均体重差异不显着,饲养时间为30d。对照组猪喂新鲜饲料(粉料中没有添加水分,且饲料保存期不超过20d);试验组猪饲喂霉变饲料。记录试验猪在饲喂发霉饲料期间的日增重、采食量、饲料转化率以及猪只的症状表现。

  1.3 器官病变试验

  试验结束时在对照组和试验组各选择一头中等体重的猪进行屠宰,进行组织器官病变的鉴定。

  1.4 测定指标

  1.4.1 霉菌毒素含量

  当饲料样品贮存到第42d时,取各组试验料样品测定其黄曲霉毒素、玉米赤霉烯酮毒素及呕吐毒素含量。

  1.4.2 日增重及饲料转化率

  在试验开始和结束时,以头为单位对试验猪进行空腹称重,每天记录采食量,计算两次称重期间的平均日增重和饲料转化率。

  1.4.3 组织切片的制作

  取试验猪肝、肾、胃、肠等内脏器官制作病理切片,并进行组织器官病变的鉴定。

  1.5 统计分析

  采用SAS软件对试验数据进行方差分析和Duncan's法多重比较。

  2 结果与分析

  2.1 水分变化(见表2)

  表2结果表明,添加水分使入模水分、出模水分和成品水分都不同程度的增加。当添加2.5%水分时入模水分比不添加水分增加了1.2个百分点,成品含水率IV组比III组提高0.31个百分点。调质过程中各组粉料的水分升幅在1.4%~1.94%之间,随着水分添加量的增加而降低。调质后的粉料在经过环模挤压成形的过程中,I组水分增加,II、III、IV组水分降低,并且随着水分添加量的增加,水分的挥发量增加。但整个混合、调质、制粒过程中,粉料吸收的总添加水仍然是随着水分添加量增加而增加。冷却过程的水分降幅随着水分添加量增加有减少的趋势。另外还发现当添加0%、0.5%的水分时,成品水分低于原料初始水分,当添加1.5%、2.5%水分时,成品水分高于原料初始水分。

  2.2 粉料中添加水分对饲料霉变的影响

  添加不同比例水分加工而成的颗粒饲料储存42d后测定霉菌毒素含量的结果见表3。

  结果表明,饲料中玉米赤霉烯酮和呕吐毒素受水分含量的影响较大,水分添加量较高时,这两种毒素含量明显增加,黄曲霉毒素含量受水分含量影响很小;储存42d后,各组饲料中黄曲霉毒素和呕吐毒素未达到引起毒性反应的浓度,而玉米赤霉烯酮含量很高,达到了引起生长猪毒性反应的浓度。
  2.3 霉变饲料对猪生产性能的影响(表4)
  结果表明,猪采食发霉饲料,采食量降低了,料肉比也不及对照组,同时显着降低平均日增重(P<0.05);另外饲喂发霉饲料期间没有发现试验猪有明显的病症,但试验组猪皮毛粗乱。

  2.3 霉菌毒素对猪组织器官病变的影响
  2.3.1 肝的病变
  肝细胞索肿胀、肝窦变窄,有的肝小叶肝索结构不清晰(见图1);肝细胞普遍呈明显颗粒变性(见图2)。

  .3.2 肾的病变
  近曲小管上皮肿胀,颗粒变性,有的上皮破碎,胞浆呈细块状进入管腔(图3);远曲小管上皮细胞破碎较多(图4)。
  其余脏器变化不明显,对照组猪的肝、肾、胃、肠未见有病理变化。

  3 讨论

  3.1 粉料中添加水分对饲料霉变的影响

  饲料发霉受许多因素影响,主要包括储存环境温度、湿度、包装、含水量、防霉剂种类和用量、初始带菌状况等。含水量是影响饲料霉变的重要因素,根据对比观察,添加同种剂量防霉剂的不同含水量的饲料,在相同环境下,保质期相差很大。在水分9%~15%范围内,水分增加1%,保质期约缩短12d(何海斌,1993)[1]。对大多数制粒产品来说,最大水分最好设定在12.5%。任何时候最终产品水分都不应超过13%,否则可能发霉,特别是在暖季(熊易强,2000)[2]。

  加工过程中混合机内的粉料水分含量影响最终产品含水量,从而影响饲料霉变,因此,在决定是否向混合机内的粉料中添加水分之前,一定要严格测定粉料初始水分。如果粉料水分低于13%,在混合时给粉料添加适量的水分有利于制粒作业;但如果粉料初始水分已达13%或更高,则不要添加水分,否则不利于成品水分的控制。而且当混合粉料初始水分低于12.5%时,目标水分应设定在高于初始水分2个百分点处,譬如,混合粉料初始水分是9.5%,则目标水分应是11.5%,而不是12.5%(熊易强,2000)。

  Nahm(1990)[3]报道,饲料含水量超过13%~14%或空气相对湿度在80%~85%之间,霉菌极易生长。温度升高使霉菌生长更快,较凉的气温能减缓霉菌生长的速度,但不能阻止其生长。他还指出,含水量平均在12.6%~12.7%的饲料在经40d储存后二氧化碳的产量达到高峰。本试验中添加不同水分组的成品颗粒含水量在11.03%~12.32%之间,试验期间室内平均温度28.3℃、平均湿度82.3%,这是比较有利于霉菌生长的条件,根据试验期间的记录,第IV组试验料经3周就可以观察到霉变现象。经42d储存后,霉菌毒素的测定结果表明,饲料中玉米赤霉烯酮和呕吐毒素浓度较高,并且受水分含量的影响较大,水分添加量较高时,这两种毒素含量明显增加。

  一些报道指出了饲料中引起生长猪毒性反应的霉菌毒素含量:黄曲霉毒素为0.3~0.5mg/kg、玉米赤霉烯酮为3~6mg/kg、呕吐毒素为1mg/kg(唐执文等,2003)[4]。本试验结果表明,各组饲料中黄曲霉毒素含量较低,未达到引起毒性反应的浓度;而玉米赤霉烯酮含量很高,达到了引起生长猪毒性反应的浓度;呕吐毒素略低于引起猪毒性反应的浓度。这与王若军等(2003)[5]对我国饲料及饲料原料受霉菌毒素污染的情况进行调查研究的结果较为一致。该调查发现,在被检的全价料中6种霉菌毒素的检出率均在90%以上,黄曲霉毒素、T-2毒素、呕吐毒素和玉米赤霉烯酮的检出率高达100%,其中黄曲霉毒素和T-2毒素未见超标,属于轻度污染;烟曲霉毒素、呕吐毒素、玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素均有不同程度的超标。

  3.2 发霉饲料对猪的危害

  饲料霉变产生的霉菌毒素对畜禽的影响极大,目前对畜禽影响最大的霉菌毒素是:黄曲霉毒素(Aflatoxins)、玉米赤霉烯酮(Zearalenone,F-2)、T-2毒素及呕吐毒素(Vomitoxin ,Deoxynivalenol,DON)。

  在哺乳动物中,猪对黄曲霉毒素的反应最敏感,其次为鹅、鸡、鹌鹑等。猪在黄曲霉毒素中毒后,轻则引起食欲不振,增长缓慢及下痢,肝脏肿大,肠壁出血;重则肝脏发生肿瘤,胆管增大,内脏出血及死亡。饲料中引起毒性反应的黄曲霉毒素含量仔猪为0.2~0.3mg/kg、中猪和大猪为0.3~0.5mg/kg。黄曲霉毒素在高温时极稳定,在饲料制粒过程中高温蒸汽处理并不能有效破坏此毒素,氨气处理可以破坏此毒素。

  玉米赤霉烯酮毒素为一种非类固醇激素,但具有雌性激素(Estrogen)的效应,由粉红镰孢真菌(Fusarium roseum)所产生。此毒素主要对雌性小猪及母猪发生作用,能使雌性小猪或母猪阴道红肿,母猪延长发情或假发情,交配后不能怀孕,严重时能引起母猪阴道脱出,子宫肿胀及影响排卵和胚胎发育。饲料中该毒素引起毒性反应的浓度为:仔猪1~3mg/kg、母猪3~6mg/kg、公猪40mg/kg。玉米赤霉烯酮毒素极稳定,热处理不能破坏此毒素。目前,仍没有经济有效的脱毒方法,一般仍使用吸附剂混入饲料,但效果不及对黄曲霉毒素明显。

  呕吐毒素和T-2毒素为类似化合物,分别由Fusarium graminearum 真菌和三线镰孢真菌(Fusarium tricinctum)所产生。呕吐毒素对猪影响最大,对禽类及牛的影响远较猪小。主要症状为猪厌食,生长速度缓慢及疾病抵抗力降低。饲料中呕吐毒素含量约1mg/kg即能引起小猪厌食,含量超过15mg/kg即能引起猪呕吐及拒食。T-2毒素中毒现象近年发现较少,其毒性能引起减食、生长缓慢、下痢、皮肤发炎红肿、肠道出血,胰脏及淋巴结较正常细小,神经系统也受影响。除使用吸附剂外,高温处理不能破坏这种毒素,氨气、氯气、碳酸铵等处理能减弱一部分呕吐毒素的毒性。

  本试验中饲喂发霉饲料的猪生产性能下降了,原因可能有两个方面:一方面在于霉变降低了饲料的营养价值;另一方面玉米赤霉烯酮和呕吐毒素等在猪体内的积累,影响其生长。霉菌对饲料营养价值的影响已引起人们的关注。霉菌所产生的酶,将饲料成分分解,使其营养价值降低,特别是饲料经粉碎后,霉菌更易侵入并增殖,导致养分的损失及变化,发霉严重的饲料饲用价值为零。Fritg等(1973)报告,串珠镰孢霉菌引起了维生素B1缺乏症。Bartov等(1982)观察到贮藏期间发霉的玉米和高粱中脂肪含量明显减少,并显着降低了代谢能含量,从而降低了生产性能。Nahm等(1988)研究得到的数据表明胡萝卜含量下降了,添加抑制霉菌剂可防止上述脂肪含量和胡萝卜素含量的下降(Nahm,1990)。另外,饲料霉变除降低饲料营养价值以外,在霉变过程中由霉菌产生酶,与饲料自身所含酶及其它因素作用所产生的代谢产物可使饲料的感官性质恶化,导致适口性差,降低动物的生产性能(田晓燕,2003)[6]。呕吐毒素等在猪体内的积累,也是影响猪生长的原因之一。喻林等(1992)[7]报道,猪对呕吐毒素的吸收率为50%~85%,其在体内的半衰期为510min。当呕吐毒素进入猪的体内,即使是低浓度的,也会在体内逐渐积累,从而干扰猪体物质代谢,特别是矿物质代谢。中毒猪的临床表现为呕吐、毛坚立、皮肤干燥、食欲递减甚至拒食。本试验中并未发现饲用发霉饲料的试验猪有明显的中毒症状,但采食量较对照组低。

  猪的剖检结果表明,猪的肝、肾发生轻微病变。这可能与玉米赤霉烯酮和呕吐霉素含量较高有关。玉米赤霉烯酮具有雌激素的作用,其强度为雌激素的十分之一,可造成家禽和家畜的雌激素水平提高,猪对此毒素较为敏感。玉米赤霉烯酮作用的靶器官主要是雌性动物的生殖系统,同时对雄性动物也有一定的影响。在急性中毒的条件下,对神经系统、心脏、肾脏、肝和肺都会有一定的毒害作用(涂华荣,2003)[8]。另外,本试验中还可能有其它霉菌毒素引起猪的内脏器官病变。

  4 小结

  综上所述,在粉料中添加水分对饲料霉变的影响不容忽视。如果确需添加水分,则要采取措施防止霉变,例如控制好成品水分、防霉包装、添加饲料防霉剂等。

参考文献略 选自饲料工业期刊

 

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